Приведены результаты работ по радиочувствительности хромосом у C. kolensis и C. insignis (Copepoda, Crustacea), у одного из которых наблюдается диминуция хроматина, а у второго — отсутствует. Результаты исследований диминуции хроматина методами радиобиологии позволили установить резкое снижение частоты хромосомных аберраций в последиминуционных клетках и обнаружить низкий уровень спонтанных хромосомных аберраций во время ранних делений. Дозы гамма-радиации от 1 до 5 Гр приводят к замедлению клеточного цикла у зародышей у C. kolensis и C. insignis, а облучение дозами от 20 Гр и выше останавливает развитие зародышей на стадии 8–16 кл., при этом процесс диминуции хроматина у зародышей C. kolensis не нарушается. Доза 200 Гр блокирует процесс диминуции хроматина у C. kolensis.
Cyclopoida, эмбриогенез, γ-излучение
1. Акифьев А.П., Беляев И.Я., Гришанин А.К. и др. Аберрации хромосом, диминуция хроматина и их значение для понимания молекулярно-генетической организации эукариотических хромосом // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. Т. 36. № 6. С. 789–797.
2. Гришанин А.К., Шеховцов А.К., Бойкова Т.В. и др. Проблема диминуции хроматина на рубеже ХХ и XXI веков // Цитология. 2006. Т. 48. № 5. C. 379–397.
3. Нейфах А.А. Сравнительное радиационное исследование морфогенетической функции ядер в развитии животных // Журнал общей биологии. 1961. Т. XXII. № 1. С. 42–57.
4. Нейфах А.А. Проблема взаимоотношений ядра и цитоплазмы в развитии. М.: ВИНИТИ, 1962. 51 с.
5. Нейфах А.А., Лозовская Е.Р. Гены и развитие организма. М.: Наука, 1984. 337 с.
6. Сарапульцев Б.И., Гераськин С.А. Генетические основы радиорезистентности и эволюция. М.: Энергоатомиздат, 1993. 208 с.
7. Akifyev A.P., Khudolii G.A., Yakimenko A.V. et al. The G¹-process in PHA-stimulated human lymphocytes and the appearance of radiation-induced chromosome aberrations // Russ. J. Genet. 1995. Vol. 31. P. 485–491.
8. Beermann S. The diminution of heterochromatic chromosomal segments in Cyclops (Crustacea, Copepoda) // Chromosoma. 1977. Vol. 60. P. 297–344. DOI:https://doi.org/10.1007/BF00292858337.
9. Einsle U. Crustacea: Copepoda: Calanoida und Cyclopoida. Subwasserfauna on Mitteleuropa 8, Heft 4. Stutgart: Teil Gustav Fischer Verlag, 1993. 209 p.
10. Dedukh D., Krasikova A. Delete and survive: strategies of programmed genetic material elimination in eukaryotes // Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 2022. Vol. 97. P. 195–216. DOI:https://doi.org/10.1111/brv.12796.
11. Drotos K.H., Zagoskin M.V., Kess T. et al. Throwing away DNA: programmed downsizing in somatic nuclei // Trends in Genetics. 2022. Vol. 38. P. 483–500. DOI:https://doi.org/10.1016/j.tig.202202003.
12. Geyer-Dushinskaya I. Experimental research on chromosome elimination in Cecidomyiidae (Diptera) // J. Exp. Zool. 1959. Vol. 141. P. 391–441. DOI:https://doi.org/10.1002/jez.1401410302.
13. Geyer-Duszynska I. Spindle disappearance and chromosome behavior after partial embryo irradiation in Cecidomyiidae // Chromosoma. 1961. Vol. 12. P. 233–247.
14. Goday C., Pimpinelli S. The occurrence, role and evolution of chromatin diminution in nematodes // Parasitol. Today. 1993. Vol. 9. P. 319–322. DOI:https://doi.org/10.1016/0169-4758(93)90229-9.
15. Grishanin, A.K., S.V. Degtyarev S.V., Akif'ev A.P. Chromosomal radiosensitivety as associated with chromatin diminution in Cyclops (Crustacea, Copepoda) // Russ. J. Genet. 2002. Vol. 308. P. 373–378.
16. Grishanin A.K., Akifyev A.P. The peculiarities of the radiation mutagenesis of Cyclops kolensis and Cyclops insignis (Crustacea, Copepoda) // Radiation Biology. Radioecology. 2005. Vol. 45. P. 294–298.
17. Grishanin A.K. Chromatin diminution in Copepoda (Crustacea): pattern, biological role nd evolutionary aspects // Comp. Cytogen. 2014. Vol. 8. P. 1–10. DOI:https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v8i1.5913.
18. Grishanin A.K., Chinyakova O.A. Study of chromatin diminution in Cyclops kolensis (Copepoda, Crustacea) by radiobiological methods // Comp. Cytogen. 2021. Vol. 15. P. 329–338. DOI:https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v15.i4.64350.
19. Jaeger J. Shift happens: The developmental and evolutionary dynamics of gap gene system // Current Opinion in Systems Biology. 2018. Vol. 11. P. 65–73. DOI:https://doi.org/10.1016/j.coisb.2018.08.004.
20. Kloc M., Kubiak J.Z., Ghobrial R.M. Natural genetic engineering: A programmed chromosome/DNA elimination // Developmen. Biol. 2022. Vol. 486. P. 15–25. DOI:https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2022.03.008.
21. Müller F., Tobler H. Chromatin diminution in the parasitic nematodes Ascaris suum and Parascaris univalens // Int. J. Parasitol. 2000. Vol. 30. P. 391–399. DOI:https://doi.org/10.1016/s0020-7519(99)00199-x.
22. Tobler H., Etter A., Müller F. Chromatin diminution in nematode development // Trends in Genetics. 1992. Vol. 8. P. 427–432. DOI:https://doi.org/10.1016/0168-9525(92)90326-y.
23. Tobler H., Müller F., Back E., Aeby P. Germ line — soma differentiation in Ascaris: a molecular approach // Experientia. 1985. Vol. 41. P. 1311–1319.
24. Wang J., Davis R.E. Programmed DNA elimination in multicellular organisms // Current Opinion in Genetics & Development. 2014. Vol. 27. P. 26–34. DOI:https://doi.org/10.1016/j.gde.2014.03.012.
